原代细胞是直接取自活组织的细胞，并用于体外生长。这些细胞经历了很是少的群体倍增，因此与连续(肿瘤或人工永生化)细胞系相比，它们更能代表它们所衍生组织的主要功效身分，使得原代细胞成为更具代表性的体内模型。
原代细胞疏散是指将组织疏散制成细胞悬液后从中获取目的细胞的历程，获得高纯度、高活性的原代细胞则是许多细胞实验乐成的要害要素之一，原代细胞疏散的要领有许多种：悬浮离心法、直接组织块法、酶消化法、非酶消化法、机械疏散法等。
人或动物体内(或胚胎组织)由于多种细胞结合紧密，倒运于各个细胞在体外培养中生长滋生，纵然接纳1mm3 的组织块，也只有少量处于周边的细胞可能生存和生长，若需获取大宗细胞，必须将现有的组织块充疏散开，使细胞解离出来，常接纳的要领如下：
一、悬浮细胞的疏散要领
组织质料若来自血液、羊水、胸水或腹水的悬液质料，最简单的要领是接纳1000r/min的低速离心10分钟。经离心后由于种种细胞的比重差别可在分层液中形成差别层，这样可凭据需要收获目的细胞。
二、实体组织质料的疏散要领
关于实体组织质料，由于细胞间结合紧密，为了使组织中的细胞充分疏散，形成细胞悬液，可接纳机械疏散法(物理裂解)和消化疏散法。
(一)机械疏散法
所取质料若纤维身分很少，如脑组织，部分胚胎组织可接纳剪刀剪切、用吸管奏乐疏散组织细胞或将已充分剪碎疏散的组织放在注射器内(用九号针)，使细胞通过针头压出，或在不锈钢纱网内用钝物压挤(常用注射器钝端)使细胞从网孔中压挤出。此法疏散细胞虽然简便、快速，但对组织机械损伤大，并且细胞疏散效果差。此法仅适用于处理纤维身分少的软组织。
(二)消化疏散法
组织消化法是把组织剪切成较小团块(或糊状)，应用酶的生化作用和非酶的化学作用进一步使细胞间的桥连结构松动，使团块膨松，由块状酿成絮状，此时再接纳机械法，用吸管奏乐疏散或电磁搅拌或在摇珠瓶中振荡，使细胞团块得以较充分的疏散，制成少量细胞群团和大宗单个细胞的细胞悬液，接种培养后，细胞容易贴壁生长。
消化疏散法的操作办法
1)剪切把组织块剪碎，呈 1~5mm3 巨细的组织块。
2) 加液漂洗 将碎组织块在平皿(或三角烧瓶)中用无钙镁 PBS 洗 2-3 次(接纳倾斜，自然沉降法)。
3)消化 加入消化液 (胰卵白酶或胶原酶或 EDTA )于 37℃水浴中作用适其时间 (中间可轻摇 1~2 次)，若组织块膨松呈絮状可终止，若变革不大可更换一次消化液，继续消化直至膨松絮状为止。胰卵白酶消化时间不宜过长。
4)弃去消化液 接纳倾斜自然沉降或低速离心法尽量弃去消化液。
5)漂洗 将含有钙、镁离子的培养基沿瓶壁徐徐加入，中止消化反应，接纳漂洗法洗 2-3 次后，加入完全培养基。
6)机械疏散 接纳吸管奏乐或振荡法，使细胞充疏散开后用纱网或 3~4 层无菌纱布过滤后分瓶培养，若要求不高可接纳倾斜自然沉降 5~10 分钟，吸上层细胞悬液进行分瓶培养。
注意事项如下
1)组织块必须漂洗 2-3 次以除去组织中的钙、镁离子和血清对胰卵白酶和 EDTA 的抑制作用。
2)胰卵白浓度不宜过高，作用时间不可太长，以制止毒性作用。
3)消化后组织不但要尽量弃去消化液，以制止毒性爆发，并且行动要轻，以制止膨松的细胞随漂洗而丧失
三、酶消化法
1）无菌
确保使用无菌设备、试剂和技术收集和处理组织。使用个人防护设备以制止污染。使用0.22微米的膜无菌过滤所有酶和试剂。
2）切块
用无菌剪刀或手术刀将组织标本切成小块(通常为2×4mm)，然后将小块放入选定的缓冲液、培养基或盐溶液中。
3）加酶
将组织清洗三次以消除多余的血液卵白，然后加入您选择的酶如胶原酶、卵白酶、木瓜卵白酶或胰卵白酶。通常，约0.5 mg/ml～1.5mg/ml的酶。
4）孵育
将组织样本在其最佳温度下孵育，通常在37℃下孵育30～90分钟。按期混淆或轻轻摇动标本。
5）洗涤
通过轻轻移液来疏散细胞(也称为研磨)，然后，使用细网过滤细胞悬浮液。让细胞沉淀并滗出多余的含液酶;洗两到三次。含有FBS，BSA或其他抑制剂的洗涤溶液也可用于阻止酶消化。
6）剖析
将细胞重悬于正确的培养基或缓冲液中，然后定量测定细胞产量和活力。这是细胞疏散历程中的重要办法，因此您可以评估解离技术的结果。大大都研究人员使用血细胞计数器测定细胞产量，并使用台盼蓝重氮染料丈量细胞活力。
7）培养
凭据所疏散的细胞来选择最适合研究的计划和处理办法来培养细胞。
重点注意事项
①使用细胞疏散酶时，请注意温度和湿度条件。如卵白水解酶可以自动剖析，因此建议在使用前立即将其溶解，并在冰上生存2℃～8℃。
②通常用于细胞疏散的大大都酶可以直接溶解于平衡盐溶液或所选缓冲液中。关于许多细胞疏散中，确保解离期间的组织存活，需要孵育培养基充分氧化并在生理pH下缓冲。95%O2、5%CO2平衡的介质来完成。
