细胞苏醒流程
1.从液氮罐中取出冻存细胞，放入37℃水浴锅中融化，轻柔离心后收集细胞沉淀；
2.缓慢用移液枪吸去上清，加入适量浓度和体积的完全培养基，重悬细胞沉淀，转移至细胞培养皿或细胞培养瓶；
3.凭据细胞培养皿或者培养瓶的体积，补足完全培养基，放入二氧化碳培养箱中培养视察。
操作中的注意事项&小妙招
① 小心取出冻存管
许多小型液氮罐的设计是将细胞冻保存带盖的提篮中，提篮会浸没在液氮中。由于提篮中没有孔格的划分，细胞冻存管无法摆放整齐。取用细胞时候，实验人员经常需要逐一检察，寻找计划苏醒的细胞，此历程耗时过久，可能会导致其他冻存管内的细胞受损。
一般大型液氮罐会配置成列的冻存架和细胞存储盒，取出冻存架和放回都需要平稳小心处理，制止带出大宗液氮。罐内液氮较多时，可适当在罐口四周停留，等大部分液氮回流后再拎出。
② 快速融化待苏醒细胞
当找到准备苏醒的冻存管后，不要着急放入水浴锅，先检查封口膜是否完整（关于冻存细胞时，是否用封口膜的问题，有经验的呢，都会发明加不加都一样的），如果贴了医用胶布，胶布是否有破损？因为一旦冻存管中有液氮流入，直接放入水浴锅中，管内压力骤升，可能导致冻存管炸裂，危及实验人员。推荐使用内旋的冻存管，不宜爆炸。如果只有外旋的冻存管，取出后应尽快倒置/水平安排数十秒，使得液氮流出。
苏醒细胞的焦点技术，简而言之就是快融。从液氮罐中取出的细胞，需实时放入37℃水浴锅，进行快速融化，期间需不绝地轻柔摇晃冻存管。最幸亏两分钟内完全融化细胞。出于卫生考虑，有些细胞房没有水浴锅，所以许多苏醒操作，需要在差别实验室进行。如果两个实验室距离较远，且实验室室温较高，可提前准备一只洁净的烧杯，装入37℃的水作中间缓冲。
注意
? 苏醒时不要让水浴锅中的水，流入冻存管中造成污染。
? 苏醒历程中要格外注重无菌操作，经水浴锅融化后，需对冻存管消毒。最好同时更换手套和口罩，全程制止移液器接触管口及管壁。小妙招：将冻存管放入无菌一次性PE手套中，再放入水中融化，制止污染也便当操作。
③ 轻柔收集细胞
收集细胞前，要将所用培养基提前预热并摆放整齐，制止现用现配延长苏醒进程，实时让刚苏醒的细胞接触正常的生长情况。若冻存液中保存DMSO，请凭据所用细胞对其敏感的水平，判断要不要离心弃除。离心目的，一个是去除DMSO，一个是去除死细胞。
刚苏醒的细胞状态比较软弱，应制止多次奏乐和离心。好比原代细胞在苏醒融化后，尽量不要进行离心操作，直接补足培养基，使细胞疏散均匀，等3-6小时，细胞贴壁后，进行换液处理。此方法也适用于其他冻存状态一般的细胞。
④ 培养前，计数&活力检测
苏醒历程中，细胞计数必不可少。原则上，冻存前和苏醒后，都需要对细胞进行计数和活率剖析，判断冻存的效果和细胞苏醒后的状态。
2018年9月，美国药典（USP-NF）出台了关于细胞冻存相关政策并明确指出，台盼蓝不可很好地识别刚苏醒的细胞（细胞的种类和台盼蓝的浓度差别，对染色结果都有较大的影响），建议使用两种以上的要领进行细胞计数，如结合荧光染色计数法。
⑤ 支原体或细菌的污染。疏散培养物，检测支原体。清洁支架或培养箱。如发明支原体污染，抛弃培养物。建议使用的培养基提前用一次性真空过滤器过滤一下，能有效除去支原体、细菌等，0.1μm的过滤器可以去除支原体，0.22微米去除细菌。
⑥ 苏醒的细胞自己状态欠好，已经老化，失去贴附性，建议启用新的保种细胞。如果细胞比较珍贵或没有备份细胞，可实验将不贴壁细胞收集离心，再用 PBS 将沉淀清洗一遍，离心后的沉淀加入胰酶重新消化接种，同时提高血清浓度到
15%~20%。
苏醒后是否乐成，凭据接种后细胞的形态和贴壁率而定，倘若第二天有95%以上的细胞贴壁，且形态良好，则说明苏醒乐成。苏醒接种的时候，接纳较高的接种密度，使细胞的整体密度高一些，有利于细胞的生长。
