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肿瘤细胞转移主要包括以下5个历程：
原位侵袭（Local invasion），
肿瘤细胞内渗（Intravasation），
循环系统存活（Survival in the circulation），
肿瘤细胞外渗（Extravasation），
形成转移灶（Micrometastasis formation）等 。
其中细胞侵袭爆发在第一步，即肿瘤细胞在原位突破基底膜，然后内渗进入血管、淋巴管的历程 。其侵袭性是肿瘤相关信号通路、药物治疗、靶向治疗、致癌/抑癌基因等肿瘤学研究的一个重要指标 。
（肿瘤细胞转移历程，来源DOI:10.1016/j.cell.2011.09.024）
肿瘤细胞侵袭实验通常利用细胞小室（常用6孔、12孔、24孔板等）进行检测 。
与肿瘤细胞迁移实验差别的是，需在聚碳酸酯膜上侧铺一层基质胶，用以模仿细胞外基质 。
肿瘤细胞必须排泄基质金属卵白酶（MMPs）消化基质才华进入下室，更好的模拟了动物体内的情况 。
侵袭实验历程
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a. 基质胶包被：
(a) 将基质胶置于冰中并在4℃融化，使用预冷的移液管或吸头混淆基质胶至均匀状态 。(b) 在冰上，将基质胶用无血清培养液凭据1:8的比例进行稀释，例如取8?l基质胶加入64?l不含血清的培养液中，使用预冷的吸头混淆至均匀状态 。
注：常用的稀释比例为1:4、1:6、1:8，可凭据实验具体情况调解稀释比例 。(c) 取60?L上述混淆溶液笔直加入细胞小室中，使其均匀平铺在底部 。
(d) 吸出未结合的基质胶 。
(e) 加入100?l不含血清的培养液，将培养板置于37℃培养箱孵育30分钟，进行水化 。(f) 去除小室中液体，检查是否有液体穿过小室进入到下室中，若没有，则可用于接种细胞 。
b. 细胞悬液的制备：(a) 对细胞进行12-24小时的饥饿处理 。（非必须办法）(b) 消化细胞，用不含血清的培养液重悬，调解细胞密度为5-50万个/mL 。
c. 细胞接种：(a) 取500?L含10% FBS的培养液加入24孔板下室，用镊子将细胞小室置于24孔板内 。
(b) 取200?L细胞悬液加入细胞小室 。(c) 将24孔板置于培养箱中培养24-48小时 。
d. 细胞牢固、染色：(a) 取出细胞小室，去除培养液，用棉签轻轻擦拭基质胶及细胞 。(b) 在24孔板洁净的孔中加入600?l 4%多聚甲醛牢固液，将小室放入牢固20-30分钟 。(c) 弃牢固液，PBS洗涤小室1次 。
(d) 在24孔板洁净的孔中加入适量结晶紫染色液，将小室放入染色5-10分钟 。(e) 取出小室，PBS洗涤3次 。
(f) 适当风干后，显微镜下视察并计数 。
除细胞侵袭实验外，基质胶可被用于类器官培养、干细胞剖析、血管生成、体内肿瘤爆发等多项研究 。
