核酸提取是指将核酸（DNA和RNA）从细胞中提取出来的历程 ，总的来说包括细胞裂解、核酸纯化及后续核酸浓度、纯度测定的办法。凭据原始样品的种类和核酸产品后续的种种应用目的 ，细胞裂解和核酸纯化办法有差别的处理要领和要求。
一、实验室中的DNA提�。�
案例一：小鼠基因型判定实验的模板DNA提取
初始样品为小鼠尾切段� ；蛐团卸ㄊ笛槎訢NA模板的浓度、纯度要求不高 ，消化提取历程相对简单。
实验办法：
1.将1cm尾巴切段置于1.5mL微量离心管中 ，加入适量裂解液（Lysis buffer）和卵白酶（Proteinase K）于55~65℃水浴留宿消化。
2.充分消化后的尾巴样品加入沉淀液（Precipitation buffer）后用旋涡混匀器来使杂质卵白充分沉淀 ，杂质沉淀后通过离心操作（如4℃ ，4000Xg ，5min） ，取出溶有目标DNA的上清液 ，抛弃杂质沉淀。
3.上清液中加入100%异丙醇 ，小心倒置离心管30~40次 ，便可以将产品DNA沉降。离心操作（4℃ ，10000Xg或12000rpm ，10min）去除上清。
4.用75%乙醇洗涤两次DNA产品 ，待乙醇充分挥发后 ，用水或TE缓冲液（Tris-EDTA buffer）收获DNA模板产品。
进行后续的PCR扩增实验前 ，可以使用Nanodrop仪器来进行DNA浓度和纯度的测定来提高PCR反应的乐成率。在PCR扩增实验不顺利的情况下 ，也可以进一步对DNA产品的完整度进行检测 ，具体要领可以参考核酸检测和核酸扩增的有关内容。
案例二：用于重组的质粒DNA提取
用于重组的质粒对DNA产品的浓度、纯度和完整度都要求较高 ，不然无法乐成完成质粒酶切和酶连的办法。
实验办法：
1.从含有留宿培养大肠杆菌的试管中取出适量菌液置于微量离心管中 ，低速离心（4000Xg ， 5min）处理后收获大肠杆菌 ，除去培养液。
2.使用质粒提取试剂盒(Plasmid DNA extraction kit)提取大肠杆菌质粒。原理菌体裂解后 ，加入中和液（Neutralization buffer）过微型柱 ，使DNA特异结合于柱上 ，而其他杂质会过柱洗脱。最后用洗脱液(Elute buffer)洗下DNA即可获得质粒DNA产品。
3.经试剂盒提取后的质粒DNA有时需要经电泳切胶接纳的操作将目标质粒DNA与其他DNA疏散。切下的胶消化后经DNA纯化试剂盒纯化即可获得纯度较高的目标质粒DNA。具体的内容可以参考核酸检测的有关内容。
二、实验室中的RNA提取
[ RNA Extraction: Principle, Procedure, Protocol and Importance – Genetic Education]：
RNA提取历程与DNA类似 ，也是通过裂解细胞后通过有机溶剂（苯酚、氯仿、异戊醇）沉降杂质的要领来疏散RNA。但RNA的稳定性比DNA低许多 ，因此对RNA提取对温度和污染清除的要求更高。实研操作一般从以下几个角度来提升乐成率：降低RNA水解酶活性、提升RNA稳定性、使RNA与DNA和卵白疏散、仅沉降RNA、有效去除DNA。
案例一：总RNA提取
实验办法与DNA提取类似 ，但有机溶剂的使用会有所差别。在首次离心后 ，混淆物会分为三层 ，RNA溶于上层无色水相 ，而DNA和卵白会处于中间层 ，组织残渣等杂质处于底层酚-氯仿相中2。
实验办法：
1.向提取样品中加入裂解液（如Trizol） ，裂解细胞与组织 ，室温静置5-8分钟。
2.加入氯仿 ，充分混匀后离心（4℃ ，12000rpm ，10min） ，取出上清液。
3.向上清液中加入异丙醇沉降RNA ，并离心（4℃ ，12000rpm ，10min）弃去上清。
4.用75%乙醇洗涤产品两次 ，待乙醇挥发后加入RNase-free水溶解产品。
实验中用到的南宫28耗材和仪器：
枪头、微量离心管、（15、50mL）离心管、迷你旋涡疏散器（105003）。
